Programme de la conférence

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Vue d’ensemble des sessions
Session
2-F: Photonique Sciences du Vivant - Physique et Imagerie Optique
Heure:
Lundi, 01.07.2024:
17:00 - 18:30

Salle: Amphi B150


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Présentations
17:00 - 17:15

BIOMECHANICS WITH OPTICAL TWEEZERS

N. WESTBROOK

Université Paris-Saclay, Institut d'Optique Graduate School, CNRS, Laboratoire Charles Fabry, France

Two applications of optical tweezers to biomechanics are described: firstly, combining force and fluorescence microscopy to understand the connection between a force applied on a cell membrane and the internal molecular force involved; secondly, testing the rigidity of blood clots in search of a diagnosis for hypercoagulability and thrombosis.



17:15 - 17:30

PARTIAL MUELLER POLARIMETRY FOR BIOMEDICAL IMAGING AT VIDEO-RATE

T. NOVIKOVA1,2, J. C. RAMELLA-ROMAN2,3

1CNRS, Ecole polytechnique, IP Paris, Palaiseau, 91120, France; 2Department of Biomedical Engineering, Florida International University, Miami, FL 33174, USA; 3Department of Ophthalmology, Herbert Wertheim College of Medicine, Florida International University, Miami, FL 33199, USA

We present the theoretical framework and experimental studies on calculating the linear retardance, azimuth of optical axis and linear retardance of biotissue using the first 3 rows of Mueller matrix that can be measured with polarization-sensitive camera at > 25 fps rate, thus, paving the way for in vivo diagnostic imaging in clinical settings..



17:30 - 17:45

MICROSCOPIE DE BIREFRINGENCE A BALAYAGE LASER ET PLEIN CHAMP PAR CODAGE SPECTRAL DE LA POLARISATION

H. LAVIEC1, X. THEILLIER2, S. RIVET1, M. DUBREUIL1, Y. LE GRAND1

1Laboratory of Optics and Magnetism OPTIMAG UR 938, F-29200 Brest, France; 2Department of Physics and Bernal Institute, University of Limerick, V94 T9PX Limerick, Ireland

Nous présentons une méthode basée sur le codage spectral de la polarisation permettant d’accéder avec une sensibilité optimale à la biréfringence d’un échantillon en un temps compatible avec la microscopie à balayage laser. Ce concept est étendu à la microscopie plein champ associée à une caméra hyperspectrale.



17:45 - 18:00

MODÉLISATION POUR L’IMAGERIE DE POLARISATION DE TISSUS BIOLOGIQUES RÉSOLUE EN PROFONDEUR

J. FADE1,2, V. ESPINAS1,2, J. WOJAK1,2, J. EL ZAHER1,2, L. SIOZADE-LAMOINE1,2, C. DEUMIÉ1,2, A. DA SILVA1,2

1Aix Marseille Univ, CNRS, Centrale Med, Institut Fresnel, Marseille, France; 2Aix-Marseille Univ, Centre Européen de Recherche en Imagerie Médicale (CERIMED), Marseille, France

Un modèle simplifié de décomposition de la matrice de Mueller est proposé pour décrire le sondage en profondeur de tissus biologiques par filtrage polarimétrique. Le modèle phénoménologique facilite la récupération quantitative des contributions maintenues en polarisation vis à vis des contributions multidiffusées dans les images polarimétriques.



18:00 - 18:15

SECTIONNEMENT OPTIQUE EN MICROSCOPIE INTERFÉRENTIELLE EN RÉFLEXION

C. VENTALON1, O. KIRICHUK2, L. BUREAU2, D. DEBARRE2

1Institut de Biologie de l'Ecole Normale Supérieure, École Normale Supérieure, CNRS, INSERM, Université PSL, Paris, France; 2Laboratoire Interdisciplinaire de Physique, CNRS UMR5588, Université Grenoble Alpes, France

La microscopie interférentielle en réflexion permet la caractérisation optique de films minces organiques et de leurs interactions avec des cellules. Intégrer un sectionnement optique par illumination structurée améliore la sensibilité de cette technique plein champ et fournit des informations quantitatives sur des échantillons complexes.



18:15 - 18:30

TERAHERTZ ATR SHEDS LIGHT ON REAL-TIME EXCHANGE KINETICS OCCURRING THROUGH PLASMA MEMBRANE DURING PHOTODYNAMIC THERAPY

B. LORDON1, X. ZHENG1, A.-F. MINGOTAUD2, P. VICENDO2, R. BRIVAT2,3, I. FOURQUAUX3, L. GIBOT2, G. GALLOT1

1LOB - Ecole polytechnique, France; 2SoftMat, Université de Toulouse; 3Centre de Microscopie Electronique Appliquée à la Biologie, Université de Toulouse

Terahertz Attenuated Total Reflectance spectroscopy provides, in a single measurement, the relative number of defects per membrane surface created by oxidative stress generated during photodynamic therapy (PDT), offering early, sensitive real-time information.



 
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